当前位置:首页>农业>PBJ | 中国农业大学孙其信院士团队揭示小穗数基因WAPO1通过翻译后修饰TaFT1调控小麦穗型与产量分子机制

PBJ | 中国农业大学孙其信院士团队揭示小穗数基因WAPO1通过翻译后修饰TaFT1调控小麦穗型与产量分子机制

  • 2026-10-01 17:02:28
PBJ | 中国农业大学孙其信院士团队揭示小穗数基因WAPO1通过翻译后修饰TaFT1调控小麦穗型与产量分子机制
近日,Plant Biotechnology Journal杂志在线发表了由中国农业大学孙其信院士团队撰写的“Post-translational control of TaFT1 by WAPO1 ubiquitination shapes spike architecture and yield in wheat”论文。该研究工作通过解析小麦成花素蛋白TaFT1的稳定性调控机制,揭示了F-box蛋白WAPO1介导的泛素化降解途径在协调抽穗期与穗粒数中的关键作用。研究人员发现,WAPO1是控制每穗小穗数的主效数量性状位点QSns.cau-7A的功能等位基因,可直接作为E3泛素连接酶靶向降解TaFT1。进一步分析表明,WAPO1蛋白F-box结构域中的一个关键错义突变(C47F)显著影响每穗小穗数;与栽培品种轮选987中携带的WAPO-A1f(编码47C)相比,大穗种质AS420中的优异等位变异WAPO-A1b(编码47F)对TaFT1具有更强的结合亲和力与降解能力。在幼穗分生组织中,WAPO-A1b通过增强TaFT1的降解,削弱TaFT1–TaFDL转录复合体的形成,进而下调春化基因VRN1/WAP1的表达,最终在不延迟抽穗的前提下显著提高每穗小穗数。值得注意的是,该有利等位变异WAPO-A1b在现代育种过程中受到正向选择,且在田间试验中发现可显著提升小麦产量。研究团队报道的这一基于WAPO-A1b的翻译后调控机制,为深入解析小麦穗型建成的分子基础及高产分子设计育种提供了明确的靶标基因、调控路径及优异种质资源。
WAPO1蛋白包含一个典型的F-box结构域,其作为SCF(SKP1–CUL1–F-box)泛素连接酶复合体的核心组分发挥作用,暗示其在泛素-蛋白酶体系统(UPS)中具有关键的底物识别功能(Kuzay et al., 2019)。泛素-蛋白酶体系统是真核生物中调控蛋白质选择性降解的核心机制,通过E1(泛素激活酶)、E2(泛素结合酶)和E3(泛素连接酶)的级联催化反应精确调控靶蛋白的稳定性(Dibus et al., 2024; Feldman et al., 1997)。其中,SCF型E3连接酶依赖高度多样性的F-box蛋白决定底物特异性,在植物激素信号转导、生长发育及开花时间调控等过程中扮演重要角色(Skowyra et al., 1997)。WAPO1中F-box结构域的存在,强烈提示其可能作为SCF复合体的底物识别亚基,靶向重要的发育调控因子进行泛素化降解(Kuzay et al., 2022)。中国农业大学孙其信院士、刘杰教授团队该研究确立了WAPO-A1b介导的翻译后调控机制,证实其通过特异性降解成花素TaFT1精准平衡每穗小穗数与抽穗期,为小麦高产分子设计育种提供了关键靶点、调控通路及优异种质资源。全文主要研究结果如下:

1. 确定WAPO-A1是调控每穗小穗数的主效基因及其关键功能变异

为挖掘调控小麦每穗小穗数的关键位点,研究者利用大穗种质AS420与栽培品种轮选987构建的重组自交系群体进行QTL定位,在染色体7AL上检测到一个主效且环境稳定的数量性状位点QSns.cau-7A(图1A)。通过侧翼标记结合关键重组单株分析,并对1395个分离后代进行筛选,最终将目标区间精细定位至225.4 kb(标记7A-3892至7A-2314),该区间内包含已报道的WAPO-A1(TraesCS7A02G481600)(图1B)(Kuzay et al., 2019; Muqaddasi et al., 2019; Voss-Fels et al., 2019)。进一步对亲本WAPO1基因的重测序数据分析揭示了两个单倍型:轮选987携带的WAPO-A1f相较于AS420携带的WAPO-A1b,除启动子区存在115 bp缺失及多个SNP外,编码区还存在一个关键的G140T变异,导致保守F-box基序内第47位氨基酸由半胱氨酸(C)突变为苯丙氨酸(F)(图1B)。尽管表达分析显示亲本及近等基因系间WAPO1转录水平无显著差异,表明启动子多态性可能不是表型分化的主要原因。利用该SNP开发的特异性标记(WAPO1-marker)分析表明,在所有田间环境型中,携带G140T(编码C47F)不同基因型的RIL株系间每穗小穗数存在极显著差异(图1C),且该变异还影响株高与穗长,表现出明显的多效性。综上所述,本研究通过图位克隆与等位基因分析,确证了WAPO1是QSns.cau-7A的候选基因,并确定了决定表型分化的关键功能性错义突变C47F。

图1基于图位克隆QSns.cau-7A确定WAPO-A1为调控每穗小穗数的候选基因

2. WAPO1以等位基因特异性的亲和力与TaFT1发生物理互作

鉴于WAPO1蛋白F-box结构域内发生C47F氨基酸替换,研究者推测该突变可能影响其蛋白生物学功能。对小麦幼穗cDNA文库进行酵母双杂交筛选,发现WAPO1与开花因子TaFT1存在相互作用(Chen et al., 2022; Yan et al., 2006)。这一互作关系通过互补实验得到验证:双分子荧光互补(BiFC)、分裂荧光素酶互补成像(LCI)和免疫共沉淀(Co-IP)实验显示WAPO-A1b与TaFT1在细胞核内发生物理互作(图2A-C)。进一步分析天然C47F变异对该互作的影响发现,比较LCI和Co-IP实验证实WAPO-A1b与TaFT1的互作信号显著强于WAPO-A1f(图2D 2E),表明氨基酸C到F的变异增强了WAPO1与TaFT1的结合亲和力。为验证WAPO1是否调控TaFT1蛋白稳定性,研究者利用TaFT1-LUC作为报告系统进行检测,发现与GFP对照组相比,WAPO-A1b-GFP显著降低了TaFT1-LUC的荧光素酶活性(图2F)。这一结果在蛋白降解实验中得到进一步证实:与对照相比,共表达WAPO-A1b-GFP导致TaFT1-MYC的蛋白积累量显著下降,而添加蛋白酶体抑制剂MG132则阻断了这一降解效应(图2G)。研究者进一步检测两者在介导降解效率上的差异。降解实验显示,虽然两种等位蛋白均可促进TaFT1降解,但WAPO-A1b的活性显著更强(图2H)。LCI报告实验同样证实,相比WAPO-A1f-GFP,WAPO-A1b-GFP使

TaFT1-LUC活性降低的能力更强(图2I)。

图2WAPO1与TaFT1相互作用促进其以等位基因特异性方式降解

3. WAPO1介导TaFT1的泛素化修饰以促进其降解

作为F-box蛋白家族成员WAPO1能够促进TaFT1降解,研究者推测WAPO1可能作为E3连接酶介导TaFT1的泛素化修饰。免疫印迹分析显示,MBP-WAPO-A1b能够形成高分子量的泛素化产物(图3A);随后,研究在体外体系中加入纯化的MBP-WAPO-A1b与GST-TaFT1融合蛋白,并在E1、E2、HA-Ub及ATP存在的条件下孵育。免疫印迹结果显示,仅在所有组分齐全的反应中才能检测到GST-TaFT1的强泛素化信号(图3B),在本氏烟草中也得到了相应的结果(图3C),进一步证实WAPO-A1b可在植物细胞中介导TaFT1泛素化。在此基础上,研究进一步鉴定了WAPO1介导TaFT1泛素化的关键位点。预测结合IP-MS分析,鉴定到TaFT1的第41位半胱氨酸(C41)和第44位赖氨酸(K44)为潜在泛素化位点。为验证其功能,构建了C41R、K44R单点突变及C41R和K44R双点突变的TaFT1载体。体外泛素化实验显示,与野生型GST-TaFT1相比,单点突变体的泛素化水平分别下降43%和37%,而双点突变体的泛素化水平下降最为显著,约为50%(图3D)。植物体内瞬时表达实验同样证实了该结果(图3E)。蛋白稳定性分析进一步表明,所有突变体TaFT1的蛋白积累水平均高于野生型,且双点突变体积累最高(图3F),证明C41与K44均为WAPO1介导泛素化的真实位点,并以累加效应调控TaFT1的稳定性。该结果为揭示WAPO1通过泛素-蛋白酶体途径调控TaFT1蛋白稳定性及每穗小穗数的分子机制提供了关键证据。

图3WAPO1通过介导TaFT1的泛素化促进其降解

4. 田间条件下提高WAPO1表达可显著提升小麦产量

进一步进行了田间农艺性状与产量评价。表型分析显示,与野生型Fielder相比,OE-WAPO-A1b株系的每穗小穗数、穗长、单穗粒数、粒长、粒宽及单穗粒重均显著提高。与之相反,WAPO1敲除突变体的所有产量相关性状均显著下降(图4E-I)。上述结果表明,WAPO-A1b等位基因在田间条件下能够有效提升小麦产量,是具有广阔应用前景的高产育种优异基因资源。

图4WAPO1过表达株系在田间条件下提高小麦产量

5. 优异等位变异WAPO-A1b在高产小麦育种中的应用潜力

为深入解析WAPO-A1b与WAPO-A1f的自然演化规律及地理分布特征,研究者基于编码区G140T关键变异开发了特异性分子标记,并利用该标记对包含28份二倍体(AA)、49份四倍体(AABB)及215份六倍体(AABBDD)小麦种质的多样性群体进行了系统性筛查(图5A)。结果显示,WAPO-A1b等位基因最早出现于二倍体AA基因组中,并随着小麦多倍化进程在四倍体和六倍体小麦中的利用率逐渐升高,暗示该等位基因在驯化与育种过程中受到了正向选择。进一步结合1568份具有明确地理来源的小麦种质分析发现,WAPO-A1b在亚洲地区来源的种质中分布频率显著更高。特别是基于268份中国微核心种质重测序数据的分析表明,WAPO-A1b是中国青藏高原春冬麦区、南方秋播春麦区及东北春麦区的主导等位基因(图5B 5C),表明该等位基因可能在长日照生态区中被优先选择利用。为评估该等位变异在育种改良中的实际效应,对339份小麦种质进行了等位基因型与穗部性状的关联分析。结果表明,携带WAPO-A1b等位基因的种质普遍具有较多的每穗小穗数和较长的穗长,证实WAPO1在六倍体小麦中功能保守,且WAPO-A1b在不同遗传背景下均能稳定地改良穗部性状。此外,田间试验对比显示,在近等基因背景下,NIL-A1b相较于NIL-A1f单穗粒重提高11%,小区产量提高4%(图5D 5E)。综上所述,WAPO-A1b不仅能够跨越多种遗传背景稳定提升产量,且在现代育种实践中具有极高的应用潜力,是小麦高产分子设计育种的重要靶标基因。

图5WAPO-A1b等位基因在小麦育种中的潜在利用

图6WAPO1–TaFT1调控模块在小麦幼穗发育中的模式图
本研究发现WAPO1通过介导TaFT1第41位半胱氨酸与第44位赖氨酸的泛素化修饰,将其经26S蛋白酶体降解,解除对幼穗分生组织的抑制,从而延长小穗分化时期。优异等位型WAPO-A1b因强结合力促进TaFT1高效降解,提高每穗小穗数与产量;而WAPO-A1f结合力减弱,导致产量降低。该研究确立了WAPO1作为分子育种关键靶标,为高产小麦选育提供了理论支撑。
中国农业大学农学院小麦研究中心孙其信院士和刘杰教授为论文共同通讯作者;博士研究生蒋钰婕、博士后李雄涛和博士生王译卿为论文共同第一作者;小麦研究中心辛明明教授、姚颖垠教授和郭伟龙教授,博士后王浩然,博士生董超群、刘香晴、王心诚、李苏芳,中国农业科学院作科所叶兴国研究员和陈朝燕副教授参与了该研究工作,小麦研究中心倪中福教授对本工作给予大力支持,小麦中心宋娜老师在小麦基因转化方面的给予了重要协助。该研究得到了农业科学技术重大项目、国家自然科学基金(32595510)、国家自然科学基金会(32372120)、生物育种国家科技重大项目(2023ZD0402402)以及国家重点研发项目(2022YFF1003401)的支持。
孙其信院士作为学术带头人的中国农业大学小麦研究中心长期围绕多倍体小麦广适性的遗传基础和分子机制、小麦产量性状形成、小麦品质性状遗传调控等一系列重要科学问题开展系统深入的研究。该团队获得国家科技进步二等奖1项,国家技术发明二等奖1项,教育部高校科研优秀成果技术发明奖一等奖1项,中华农业科技奖优秀创新团队奖1项;近5年在小麦研究方向发表Nature、Nature Communications、Molecular Plant、Science Advances等高水平研究论文50余篇。
论文链接:https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/pbi.70688

References:

l Kuzay, S., Xu, Y.F., Zhang, J.L., Katz, A., Pearce, S., Su, Z.Q., Fraser, M., Anderson, J.A., Brown-Guedira, G., DeWitt, N., Peters Haugrud, A., Faris, J.D., Akhunov, E., Bai, G.H. and Dubcovsky, J. (2019) Identification of a candidate gene for a QTL for spikelet number per spike on wheat chromosome arm 7AL by high-resolution genetic mapping. Theor Appl Genet132, 2689-2705.

l Dibus, N., Salyova, E., Kolarova, K., Abdirov, A., Pagano, M., Stepanek, O. and Cermak, L. (2024) FBXO38 is dispensable for PD-1 regulation. EMBO Reports25, 4206-4225-4225.

l Feldman, R.M.R., Correll, C.C., Kaplan, K.B. and Deshaies, R.J. (1997) A complex of Cdc4p, Skp1p, and Cdc53p/Cullin catalyzes ubiquitination of the phosphorylated CDK inhibitor Sic1p. Cell91, 221-230.

l Skowyra, D., Craig, K.L., Tyers, M., Elledge, S.J. and Harper, J.W. (1997) F-box proteins are receptors that recruit phosphorylated substrates to the SCF ubiquitin-ligase complex. Cell91, 209-219.

l Kuzay, S., Lin, H.Q., Li, C.X., Chen, S.S., Woods, D.P., Zhang, J.L., Lan, T.Y., von Korff, M. and Dubcovsky, J. (2022) WAPO-A1 is the causal gene of the 7AL QTL for spikelet number per spike in wheat. PLoS Genet18, e1009747.

l Muqaddasi, Q.H., Brassac, J., Koppolu, R., Plieske, J., Ganal, M.W. and Röder, M.S. (2019) TaAPO-A1, an ortholog of rice ABERRANT PANICLE ORGANIZATION 1, is associated with total spikelet number per spike in elite European hexaploid winter wheat (Triticum aestivum L.) varieties. Sci Rep9, 13853.

l Voss-Fels, K., Keeble-Gagnère, G., Hickey, L., Tibbits, J., Nagornyy, S., Hayden, M., Pasam, R., Kant, S., Friedt, W., Snowdon, R., Appels, R. and Wittkop, B. (2019) High-resolution mapping of rachis nodes per rachis, a critical determinant of grain yield components in wheat. Theor Appl Genet132, 2707-2719.

l Chen, Z.Y., Ke, W.S., He, F., Chai, L.L., Cheng, X.J., Xu, H.W., Wang, X.B., Du, D.J., Zhao, Y.D., Chen, X.Y., Xing, J.W., Xin, M.M., Guo, W.L., Hu, Z.R., Su, Z.Q., Liu, J., Peng, H.R., Yao, Y.Y., Sun, Q.X. and Ni, Z.F. (2022) A single nucleotide deletion in the third exon of FT-D1 increases the spikelet number and delays heading date in wheat (Triticum aestivum L.). Plant Biotechnol J20, 920-933.

l Yan, L., Fu, D., Li, C., Blechl, A., Tranquilli, G., Bonafede, M., Sanchez, A., Valarik, M., Yasuda, S. and Dubcovsky, J. (2006) The wheat and barley vernalization gene VRN3 is an orthologue of FT. PNAS103, 19581-19586.

l Liu, C., Li, Q., Shen, Z., Xia, R., Chen, Q., Li, X., Ding, Y., Yang, S., Serino, G., Xie, Q. and Yu, F. (2025) The Arabidopsis E3 ubiquitin ligase DOA10A promotes localization of abscisic acid (ABA) receptors to the membrane through mono-ubiquitination in ABA signaling. New Phytol245, 169-182.

植物生物技术Pbj交流群

为了能更有效地帮助广大的科研工作者获取相关信息,植物生物技术Pbj特建立微信群,PlantBiotechnologyJournal投稿以及文献相关问题、公众号发布内容及公众号投稿问题都会集中在群内进行解答,同时鼓励在群内交流学术、碰撞思维。为了保证群内良好的讨论环境,请先添加小编微信,扫描二维码添加,之后我们会及时邀请您进群。小提示:添加小编微信时及进群后请务必备注学校或单位+姓名,PI在结尾注明,我们会邀请您进入PI群。

最新文章

随机文章