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【 J.Adv.Res.】中国农业科学院与密苏里大学联合团队聚,揭示DON致肠道菌群失调传递毒性触发肝脏炎症的核心通路机制

  • 2026-10-28 14:27:37
【 J.Adv.Res.】中国农业科学院与密苏里大学联合团队聚,揭示DON致肠道菌群失调传递毒性触发肝脏炎症的核心通路机制

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文章信息

中文标题:肠道菌群失调传递脱氧雪腐镰刀菌烯醇毒性并引发肝炎症

英文标题:Gut microbiota dysbiosis transmits deoxynivalenol toxicity and triggers liver inflammation

期刊:Journal of Advanced Research

分区:综合性期刊一区(TOP 期刊)

作者信息:

共同第一作者:Jing Jin、Fangfang Li

其他作者:Yafan Hu、Zipei Zhang、Ruojie Zhang

通讯作者:Fuguo Xing

作者单位:中国农业科学院农产品质量与安全控制重点实验室(北京);密苏里大学食品科学系(美国)

DOI:10.1016/j.jare.2026.01.011.

Online:2026年1月

原文链接:https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2090123226000123?via%3Dihub

IF:13.0

研究背景

    脱氧雪腐镰刀菌烯醇(DON)是镰刀菌产生的常见霉菌毒素,广泛污染谷物,通过食物链进入人体后,主要靶向肠道屏障,引发肠道炎症和菌群失调。既往研究表明DON可直接导致肝损伤,但肠道菌群在DON诱导肝脏炎症中的具体作用机制尚不明确。

    本研究聚焦“肠道-肝脏轴”,探索DON是否通过扰乱肠道微生物间接触发肝脏炎症,为霉菌毒素系统性毒性提供新视角。

核心问题

  1. 明确DON对肠道屏障和菌群结构的影响

    探究DON是否破坏肠道紧密连接蛋白(如ZO-1、Occludin),改变微生物组成(如厚壁菌门、拟杆菌门比例)。

  1. 阐明肠道菌群失调与肝脏炎症的因果关系

    通过粪菌移植(FMT)实验,验证DON诱导的菌群失调是否独立于毒素直接暴露而引发肝损伤。

  1. 识别关键微生物驱动因子

    Alloprevotella和Pseudomonas等菌属在肠道屏障破坏和肝脏TLR4/MyD88/NF-κB通路的作用

  1. 解析肝脏炎症的转录调控机制

    如何通过转录组学挖掘DON及菌群移植对肝细胞免疫通路(如JAK-STAT、TLR信号)的调控网络。

研究方法

  1. 实验动物:选用 SPF 级昆明小鼠,分两阶段开展动物实验。

· 第一阶段:设置对照组、低 / 高剂量 DON 组,连续灌胃 30 天,观察毒性反应。

· 第二阶段:构建粪菌移植模型,将 DON 处理供体鼠的粪菌移植给无菌化受体鼠,持续 40 天。

  1. 样本检测:测定体重、脏器系数、血清生化与炎症因子;对肝、结肠做组织病理染色。

  2. 分子检测:用 qPCR 和 Western blot 检测肠道屏障、炎症通路相关基因与蛋白表达。

  3. 组学分析:通过 16S rDNA 测序分析肠道与肝脏菌群,转录组测序分析肝脏基因表达差异。

  4. 数据统计:采用单因素方差分析,以p<0.001为差异显著。

核心发现

  1. DON剂量依赖性地破坏肠道屏障:高剂量DON(4 mg/kg)显著降低ZO-1、Occludin表达,增加肠道通透性,导致血清LPS升高。

  2. 肠道菌群失调是肝脏炎症的关键媒介:FMT实验证明,移植DON暴露小鼠的菌群可在未直接接触毒素的受体小鼠中复现肝损伤。

  3. Alloprevotella和Pseudomonas为核心致病菌属:Alloprevotella(降解黏蛋白)与肠道屏障损伤正相关;Pseudomonas在肝脏富集,激活TLR4/MyD88通路。

  4. 肝脏转录组揭示免疫通路激活:DON直接暴露及菌群移植均上调炎症相关基因(如IL-1β、TLR4),富集于JAK-STAT、TLR等信号通路。

研究结果

01

DON破坏肠道屏障并诱导菌群失调

    小鼠口服DON(2 mg/kg或4 mg/kg)30天后,高剂量组体重显著下降,结肠黏膜结构破坏,紧密连接蛋白ZO-1和Occludin表达降低。16S rRNA测序显示,DON剂量依赖性地降低肠道菌群多样性(Chao1指数),拟杆菌门和厚壁菌门比例变化,Alloprevotella显著富集。

Fig. 1. 口服DON暴露对小鼠在30天后的影响。

02

DON通过TLR4/MyD88通路诱发肝脏炎症

    DON暴露后,肝脏炎症因子(IL-1β、IL-6、TNF-α)mRNA表达上调,血清ALT/AST水平升高,肝组织出现炎性浸润。Western blot证实TLR4、MyD88、IκB蛋白表达增加,表明TLR4/MyD88/NF-κB通路激活。

Fig. 2. 不同DON浓度下对于肝脏的影响

03

粪菌移植复现DON诱导的肝肠损伤

    受体小鼠移植DON暴露菌群后,虽未直接接触毒素,但仍出现肠道屏障损伤、血清LPS升高、肝脏炎症细胞浸润及TLR4/MyD88通路激活,证明菌群失调可独立引发肝损伤。

Fig. 3. FMT后出现肠道屏障损伤、血清LPS升高、肝脏炎症细胞浸润及TLR4/MyD88通路激活

04

相关性分析锁定关键微生物驱动因子

    Spearman分析显示,Alloprevotella与血清LPS正相关,Pseudomonas与肝脏IL-1β、MyD88表达正相关,提示二者通过破坏屏障和激活免疫通路推动肝损伤。

Fig. 4. 盲肠相关微生物群与宿主表型之间的关联分析

Fig. 5. Spearman分析证实菌群与肝脏的相关性

05

转录组揭示菌群介导的免疫调控网络

    DON暴露组肝脏差异表达基因主要富集于非酒精性脂肪肝病、mTOR信号等通路;FMT组基因则富集于JAK-STAT、病毒性心肌炎等免疫通路,表明菌群失调特异性调控肝脏炎症反应。

Fig. 6. 通过KEGG证实菌群失调特异性调控肝脏炎症反应

Fig. 7. 差异表达基因(DEGs)的比较功能富集分析

文章小结

    本研究通过粪菌移植模型证实,肠道菌群失调是DON诱导肝脏炎症的必要媒介,揭示了“DON-肠道菌群失调-屏障损伤-LPS易位-TLR4/MyD88通路激活-肝脏炎症”的损伤通路。Alloprevotella和Pseudomonas被识别为关键致病菌属,其富集与宿主代谢紊乱和免疫激活直接相关。该研究为霉菌毒素的微生态防控策略提供了理论依据,强调靶向肠道菌群可缓解DON的系统性毒性。

「READING」

图文编辑:刘思彤

图文排版:司红俐

图文审核:李静妮、黄翊峰

图文终审:赵一

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