《食品科学》:上海市农业科学院刘艳芳研究员等:β-葡聚糖调节肠道菌群健康效应机制及构效关系研究进展

肠道是人体最大的吸收和免疫器官。人体肠道内存在数以百万计的微生物，其中约99%是细菌，由此形成了一个复杂庞大的微生物群落，即肠道菌群。肠道菌群被认为是一种“超级有机体”，能够通过调控营养物质代谢、防御病原体、向免疫细胞传递信号影响宿主健康。近年来研究发现，肠道菌群失衡与炎症性肠病、结直肠癌等肠道相关疾病的病理进程高度相关，而通过膳食成分调节肠道菌群稳态逐渐成为疾病干预的新途径。膳食益生元是一种选择性发酵成分，可导致肠道菌群的组成和活性发生特定变化，从而对宿主健康有益。在众多益生元候选物质中，β-葡聚糖因其独特的结构特性备而受关注。

β-葡聚糖是由β-糖苷键连接D-葡萄糖单体形成的大分子聚合物，因具有广泛的有益生物活性而备受关注。β-葡聚糖主要通过双重途径发挥益生特性：一方面其不可消化性保障了较高的结肠递送率，为益生菌提供发酵底物；另一方面，β-葡聚糖发酵后的有益代谢产物短链脂肪酸（SCFAs）有利于修复肠道屏障、调节炎症因子水平、维持体内葡萄糖稳态和保护神经与心血管功能。值得注意的是，β-葡聚糖的生物活性与其化学结构密切相关，糖苷键类型、分子质量、分支比及空间构象均会影响多糖益生活性的发挥。与纤维素相比，谷物β-葡聚糖中β-(1→3)和β-(1→4)糖苷键的交替连接使其具有较好的溶解性，这有利于在肠道内形成高黏度环境，从而延缓胃排空速度，并减少葡萄糖、食物脂质及胆汁酸的吸收，具有显著降胆固醇和降血脂作用。真菌来源的β-葡聚糖以β-(1→3)主链结合β-(1→6)支链为特征，可以特异性识别树突状细胞相关C型凝集素-1（Dectin-1）、补体受体3（CR3）和Toll样受体（TLR）2并激活免疫反应，有利于提高机体的抗肿瘤和抗炎活性。结构多样性决定了不同β-葡聚糖的特定生理功能，因此明晰β-葡聚糖与其生物活性间的构效关系非常重要。

基于上述内容，上海市农业科学院食用菌研究所的刘懿航、耿 洁、刘艳芳*等人重点介绍不同来源β-葡聚糖的结构，阐述β-葡聚糖调节肠道菌群的主要机制，并深入分析β-葡聚糖与其益生特性间的构效关系，旨在为β-葡聚糖的进一步开发与应用提供理论依据。

01

β-葡聚糖的来源与结构

β-葡聚糖广泛存在于自然界中，主要来源于谷物、真菌、藻类和某些细菌，研究表明其具有免疫调节、抗肿瘤、抗菌、抗炎、益生活性等多种有益生理功能。其结构因来源不同而有所差异（图1）。

谷物β-葡聚糖是通过β-(1→3)和β-(1→4)糖苷键连接葡萄糖残基形成的一种线性多糖，广泛存在于大麦、燕麦、小麦和黑麦等谷物中。其结构特征为β-(1→3)和β-(1→4)糖苷键混合交替连接，具体表现为β-(1→4)连接的葡萄糖链被β-(1→3)糖苷键所中断，由此形成了不同聚合度（DP）的多糖片段，即纤维三糖基（DP3）和纤维四糖基（DP4）。不同谷物来源β-葡聚糖的DP3/DP4（物质的量比，后同）不同，燕麦DP3/DP4多为1.50～2.30，大麦DP3/DP4主要为2.10～3.49，而小麦DP3/DP4大约是3.00～4.50。因此，DP3/DP4也成为不同谷物来源β-葡聚糖的重要判别方法。谷物β-葡聚糖常被机体识别为不可消化的膳食纤维，主要在调节代谢途径方面发挥积极作用，在食品和健康领域表现出显著的生物活性且应用前景广阔。

真菌β-葡聚糖以β-(1→3)糖苷键骨架为基础，带有β-(1→6)糖苷键连接的分支结构，主要分为酵母β-葡聚糖和食用菌β-葡聚糖。酵母β-葡聚糖主要存在于酵母细胞壁中，具体结构特征为在β-(1→3)连接的葡萄糖主链上含有β-(1→6)糖苷键连接的长支链结构，且β-(1→3)糖苷键的占比高于85%。研究表明酵母β-葡聚糖具有降脂、抗氧化和抗炎特性等多种健康益处。食用菌中的β-葡聚糖一般含有β-(1→6)糖苷键连接的较短分支，大多从其子实体中提取获得。已有实验证明在香菇β-葡聚糖的主链上，每5 个β-(1→3)-葡萄糖残基上连接有两个β-(1→6)-葡萄糖支链。裂褶菌多糖的β-(1→3)-葡聚糖主链上每隔3 个或4 个葡萄糖残基就会连接有1 个β-(1→6)-葡萄糖支链。灵芝多糖和灰树花多糖在其β-(1→3)-葡聚糖主链上每3 个葡萄糖残基就包含1 个β-(1→6)-葡萄糖支链。除上述常见结构外，部分食用菌β-葡聚糖还存在无支链的β-(1→6)-葡聚糖和含β-(1→4)-葡萄糖支链的β-(1→6)-葡聚糖结构。目前已有大量研究报道了不同结构食用菌β-葡聚糖在免疫调节中的作用，证明其具有潜在临床应用价值。

细菌和藻类中的β-葡聚糖以β-(1→3)-葡聚糖为主，部分藻类β-葡聚糖还带有一定比例的β-(1→6)糖苷键侧链。可得然胶是一种线性β-(1→3)-葡聚糖，是在Agrobacterium biovar 1中被鉴定的第一种细菌β-葡聚糖，同时还在某些根瘤菌菌株中存在，具有热凝胶形成特性。海带多糖是藻类β-葡聚糖中最具代表性的一种多糖，主要由β-(1→3)糖苷键连接的葡萄糖残基构成线性主链，并通过β-(1→6)糖苷键连接的D-吡喃葡萄糖形成支链结构，一般具有较好的水溶性。

02

β-葡聚糖调节肠道菌群的健康效应

由于缺乏有效水解β-糖苷键的酶，β-葡聚糖无法在口腔、胃、小肠内消化，可以顺利到达人体结肠处。结肠内包含多种细菌，这些细菌含有碳水化合物活性酶，能够水解不同来源与结构的β-葡聚糖，并产生一系列有益代谢产物，进而促进机体健康（表1）。上述互惠关系凸显了肠道菌群是β-葡聚糖发挥健康促进作用的关键靶点，现有研究表明，β-葡聚糖通过调节肠道菌群介导的健康效应主要包括改善肠道屏障功能、调节代谢稳态、增强免疫应答和保护神经系统（图2）。

β-葡聚糖被肠道菌群发酵后会促进SCFAs的产生和肠腔pH值的降低，这对于肠道生物屏障的维护具有积极影响。pH值的降低会抑制病原微生物的生长，同时促进有益菌的繁殖。此外，该酸化过程还能改善肠道疾病中必需营养素和矿物质（如钙、磷、镁）的吸收问题。肠道机械屏障由肠道上皮细胞与上皮细胞之间的紧密连接蛋白组成。研究表明，β-葡聚糖通过增加双歧杆菌属、乳杆菌属和普拉梭菌属的相对丰度及促进SCFAs的积累从而提高紧密连接蛋白相关基因的表达（如ZO、Claudin和Occludin等），这有助于增强肠道机械屏障的正常功能。近期研究还发现，SCFAs会影响由免疫因子、免疫细胞及相关淋巴组织构成的肠道免疫屏障。丁酸可以显著激活细胞受体，诱导免疫细胞的分化或增殖；还能抑制TLR4信号通路，并激活G蛋白偶联受体（GPR）的表达，这些路径共同参与调节肠道的免疫屏障功能。黏蛋白是肠道化学屏障的重要化合物，可以有效防止有害分子进入肠道内部。SCFAs有利于促进抗炎因子的产生，通过正向调节肠道中参与黏蛋白合成基因的表达维持正常的化学屏障功能。综上所述，β-葡聚糖介导的肠道屏障保护功能主要是通过促进有益菌的生长及SCFAs的合成从而实现的（图3）。

β-葡聚糖对肠道菌群的调节作用与维持代谢稳态紧密相关，具体表现为降低血糖、血脂和胆固醇效应（图4）。大量研究发现，代谢疾病小鼠模型均呈现肠道菌群失调现象。肠道菌群对胰岛素抵抗引起的“代谢性感染”具有重要影响，例如，肠球菌属的增加已被证实与胰岛素敏感性的提升显著相关。β-葡聚糖的摄入还可以显著降低高脂小鼠的高血糖水平并改善葡萄糖耐量异常。Nakahara等研究发现，小鼠摄入β-葡聚糖后粪便中脂质与总胆汁酸含量显著增加，推测β-葡聚糖可能通过抑制重吸收机制发挥降脂作用。并且，β-葡聚糖对脂代谢紊乱的改善作用与普雷沃氏菌属、粪厌氧棒杆菌属等肠道有益菌的增加直接相关。此外，SCFAs在调控代谢稳态相关的信号通路中作用显著。乙酸不仅是肠道细胞的能量来源，还参与脂质合成和糖异生等代谢信号的传导过程。丙酸除影响糖异生过程外，还能在肝脏中显著抑制胆固醇的合成。尽管SCFAs降低胆固醇水平的机制尚未完全阐明，但已有研究发现，抑制胆固醇合成和促进低密度脂蛋白胆固醇的分解是实现其胆固醇降低效应的重要路径。

肠道菌群对维持免疫稳态以及调节免疫反应起着至关重要的作用，肠道菌群的失调会导致炎症和肿瘤形成。β-葡聚糖被大量研究证明具有显著的免疫调节作用，其主要通过增加乳杆菌属、双歧杆菌属、普雷沃氏菌属等有益菌的数量从而调节菌群平衡和减轻炎症反应，肠道菌群稳态的恢复还有利于进一步降低炎症因子（如TNF-α和IL-1β）的表达水平。β-葡聚糖抗肿瘤活性的发挥主要与拟杆菌属、嗜黏蛋白阿克曼菌和梭菌属丰度的增加有关。此外，大量研究表明，SCFAs可以与GPR相互作用，通过抑制组蛋白乙酰化酶的活性从而调节炎症相关基因的表达。其中，丁酸作为结肠上皮细胞的重要能量来源，不仅可以通过增强肠道屏障的完整性改善结肠炎症，还能通过调节细胞增殖、凋亡和分化从而预防肿瘤的发生和发展。

脑-肠轴是连接中枢神经系统与肠道菌群的双向信号通路，涉及神经免疫、副交感神经、交感神经及神经内分泌等多种作用途径，对大脑功能具有重要影响。尽管肠道菌群与大脑间作用机制的探究仍明显不足，但多数研究表明，肠道来源的信号分子在脑-肠交流中发挥关键作用。肠道菌群的失调和相关代谢物水平的减少与多种神经系统疾病的发展存在直接关联，包括阿尔茨海默症、帕金森病、亨廷顿病等（图5）。β-葡聚糖可以特异性增加乳杆菌属、真杆菌属、普雷沃氏菌属等多种有益菌的相对丰度，并产生有益代谢物如SCFAs、γ-氨基丁酸、去甲肾上腺素、5-羟色胺等，进而缓解神经炎症、调节突触蛋白表达、增强血脑屏障并改善记忆与认知障碍。因此，肠道菌群调节已被认为是预防或缓解神经系统疾病的一种有效治疗方案，菌群移植、益生元和益生菌的补充策略在动物实验中已初见成效。

03

β-葡聚糖与其益生特性间构效关系

目前，关于β-葡聚糖与肠道微生物群相互作用的研究侧重于关注这类多糖在肠道内益生作用的发挥情况。研究发现，不同肠道细菌具有特定的多糖利用位点，因而对不同结构的多糖具有选择利用性。拟杆菌倾向于将果胶、阿拉伯半乳聚糖和阿拉伯木聚糖作为发酵碳源。双歧杆菌则可在β-葡聚糖、菊粉、果胶、阿拉伯半乳聚糖和魔芋葡甘聚糖的发酵过程中显著富集。而乳杆菌属能够在以β-葡聚糖、果胶、菊粉和阿拉伯半乳聚糖为碳源的培养基中大量生长。虽然上述细菌能够广泛利用不同结构的多糖，但某些菌种更倾向于利用特定结构的多糖，进而导致不同SCFAs产生菌在特定多糖发酵过程中的选择性富集。例如，来自毛螺菌科的多种丁酸产生菌，包括Lachnospiraceae NK4A136组、毛螺菌属以及Lachnospiraceae UCG-006，它们在β-葡聚糖发酵过程中显著增加，而菊粉发酵则主要导致丁酸球菌属的富集。此外，产生丙酸的真杆菌属在阿拉伯半乳聚糖发酵过程中大量积累。综上所述，多糖结构的变化会对肠道菌群产生截然不同的影响。基于此，本节重点介绍了β-葡聚糖的结构特征与其益生作用之间的构效关系。

谷物中的β-葡聚糖主要由β-(1→3)和β-(1→4)糖苷键连接而成，研究表明，谷物来源的β-葡聚糖，尤其是燕麦和大麦β-葡聚糖被广泛证明有利于促进双歧杆菌属和乳杆菌属的增长，这种益生效应会影响葡萄糖和脂质代谢，从而改善肠道稳态并促进代谢健康。Kedia等通过体外粪便菌群发酵含9.43% β-葡聚糖的燕麦制剂，发现24 h后双歧杆菌属和乳杆菌属的水平显著提高，丙酸、丁酸的含量甚至高于葡萄糖对照组。以大麦β-葡聚糖为发酵底物也得到了类似的研究结果，双歧杆菌属和乳杆菌属相对丰度的显著增加导致SCFAs和乳酸的积累。其中，乳杆菌属丰度的增加及乳酸的积累可能通过肠道免疫反应增加了分泌型免疫球蛋白A的浓度，这有利于改善高脂模型小鼠的先天免疫系统。此外，谷物β-葡聚糖在不同食品中的益生作用也有报道。在酸奶中添加大麦和燕麦β-葡聚糖可以促进动物双歧杆菌的生长并提高其存活率。在另一项研究中，向酸奶中添加0.44%燕麦β-葡聚糖后，约10⁷ CFU/mL长双歧杆菌的存活时间延长了14 d。

相较于谷物β-葡聚糖主要与代谢健康相关，真菌来源的β(1→3)-葡聚糖则更多参与免疫调控过程。酵母β-葡聚糖在体外培养条件下可以选择性地促进双歧杆菌、乳杆菌属和拟杆菌属的生长，并且与菊粉相比，β-葡聚糖更有利于促进长双歧杆菌的生长。但对于结肠炎小鼠而言，酵母β-葡聚糖虽会增加乳杆菌属的相对丰度，但却会降低拟杆菌属的相对丰度。虽然拟杆菌属通常被视为多糖的初级降解者和促进肠道健康的有益菌，但某些菌株会在不同实验背景下表现出不同效果。此外，有研究表明酵母β-葡聚糖可以选择性促进嗜黏蛋白阿克曼菌的增长，其在肥胖和2型糖尿病中具有抗炎作用。

食用菌中的β-葡聚糖结构复杂多变，在β-(1→3)-葡聚糖的主链上连接有不同数量的β-(1→6)糖苷键侧链，其中β-(1→3)-葡聚糖可被宿主免疫细胞表面的模式识别受体，如Dectin-1特异性识别，进而启动多种免疫防御机制。从灰树花中提取的β-葡聚糖可以促进乳杆菌属和双歧杆菌属的生长，并产生乳酸、琥珀酸和戊酸等多种有益代谢物，可以有效降低结肠癌细胞Caco-2的细胞活力。猴头菇β-葡聚糖能够提高溃疡性结肠炎小鼠体内拟杆菌属、双歧杆菌属、普雷沃氏菌属和乳杆菌属等有益菌的相对丰度，有利于改善宿主免疫力。多项研究共同表明食用菌β-葡聚糖可以特异性促进肠道中丁酸产生菌的生长，如毛螺菌科、粪厌氧棒杆菌属和梭菌簇XIVa中的罗氏菌属和另枝菌属，其产生的丁酸在抗炎、增强肠黏膜屏障和调节T细胞分化方面发挥重要作用。此外，食用菌β-葡聚糖被证明同样可以调节代谢健康。例如，灵芝β-葡聚糖可以降低厚壁菌门/拟杆菌门的比值，促进卵形拟杆菌和单形拟杆菌相对丰度的增加，以及乙酸、丙酸、丁酸和戊酸的积累，这有利于预防肥胖个体中肠道菌群失调和相关代谢紊乱的发生。

β-葡聚糖的分子质量会因来源、提取方式、加工条件等不同而有所差异。已有大量文献比较分析了不同分子质量β-葡聚糖的益生活性。研究表明，低分子质量谷物β-葡聚糖倾向于增加乳杆菌属和双歧杆菌属的相对丰度。相较于830.8 kDa的高分子质量燕麦β-葡聚糖，鼠李糖乳杆菌和长双歧杆菌BB536更倾向于利用10.21 kDa的β-葡聚糖水解物。Jaskari等的研究得到了类似结果，即β-葡聚糖的水解物被证明是乳杆菌属和双歧杆菌属的选择性发酵底物。同样地，低分子质量大麦β-葡聚糖（110 kDa和12 kDa）更显著增加了双歧杆菌属的数量，并促进乙酸、丙酸、琥珀酸的积累，这说明低分子质量多糖主要利用其益生特性调节葡萄糖和脂质代谢水平；而高分子质量大麦β-葡聚糖（500 kDa）则被证明主要通过高黏度抑制脂肪吸收和减少腹部脂肪沉积从而发挥健康促进作用。

对于真菌β-葡聚糖而言，似乎并没有在多糖分子质量与其益生特性间发现一致规律。800 kDa的高分子质量酵母β-葡聚糖较220 kDa的低分子质量多糖会更显著促进乳杆菌属、双歧杆菌属水平增加，及乙酸、丙酸和总SCFAs的积累，更有利于改善阿尔茨海默症小鼠的认知能力。但在结肠炎小鼠中，低分子质量灵芝β-葡聚糖（13.3 kDa和3.51 kDa）更有利于促进乳杆菌属和双歧杆菌属等有益菌的生长，减少结肠炎致病菌的数量，同时提升乙酸、丙酸和丁酸等有益代谢产物。对香菇β-葡聚糖的益生特性研究也得到了类似结果，与高分子质量（2.19×10³ kDa和1.82×10³ kDa）多糖相比，低分子质量（1.41×10³ kDa）β-葡聚糖促进毛螺菌属增长和丙酸、丁酸及戊酸积累的效果更显著。而Chen Shuang等的研究表明，不同分子质量的猴头菇β-葡聚糖会通过不同途径分别发挥其益生特性。其中，高分子质量猴头菇β-葡聚糖（6.944×10³ kDa）能够特异性增加普雷沃氏菌_NK3B31组、毛螺菌属和普拉梭菌属的相对丰度，而低分子质量（2.158×10³ kDa）倾向于促进乳球菌属的生长；代谢产物的检测结果还表明高分子质量β-葡聚糖被发酵后会产生更多的丁酸，而低分子质量多糖则会显著促进乙酸和丙酸的积累。综上所述，β-葡聚糖的预期益生功能会随分子质量的不同而不同，应根据不同的研究目标采取不同的干预措施。

β-葡聚糖的溶解度是其发挥益生活性和更广泛生物功能的关键因素。溶解度直接影响β-葡聚糖的肠道菌群调节、免疫调节和代谢调节能力。谷物β-葡聚糖结构中β-(1→3)糖苷键的存在会在一定程度上破坏线性β-(1→4)-葡聚糖的刚性结构，从而增加多糖的溶解度。研究表明，可溶性谷物β-葡聚糖有利于维持血糖、血脂和胆固醇的正常水平。Miyamoto等研究表明大麦β-葡聚糖通过改变高脂小鼠肠道中双歧杆菌属的相对丰度和总SCFAs的浓度从而减少食物摄入并提高胰岛素敏感性。一项临床试验发现，大麦β-葡聚糖可以显著增加拟杆菌属和普雷沃氏菌属的相对丰度，这种对肠道菌群的正向调节作用与心血管疾病风险标志物的减少紧密相关。

真菌β-葡聚糖的结构复杂，其分子质量、分支比和构象等结构特性均会显著影响多糖的溶解度。研究发现，含有更多支链的β-葡聚糖的水溶性更高，这有利于提高肠道菌群的多糖利用率并促进有益代谢产物的积累。可溶性裂褶菌β-葡聚糖可以通过重塑肠道微生物群从而抑制肥胖，其主要是通过增加SCFAs产菌（如粪厌氧棒杆菌属、粪芽孢菌属和罗氏菌属）的相对丰度，同时减少肥胖相关细菌（如副拟杆菌属和乳酸乳球菌属）的数量。可溶性黑木耳β-葡聚糖经体外发酵后显著提高了双歧杆菌属、乳杆菌属、拟杆菌属和真杆菌属的相对丰度。不溶性β-葡聚糖虽然会降低肠道微生物对多糖的接触和利用程度，但这种特异结构的多糖可以促进肠道特定菌群的繁殖，这在一定程度上可以避免肠道菌群对同种发酵底物的竞争利用，有利于研究者更准确地分析肠道菌群对多糖的发酵情况。Leitch等证实，厚壁菌门的特殊菌群，如梭菌群IV和XIVa具有定植和利用不溶性底物的能力。它们是肠道中重要的产丁酸细菌，丁酸被认为是肠道内稳态调节的重要参与者，特别是与免疫功能密切相关。溶解度较差的食用菌β-葡聚糖，如茯苓线性β-(1→3)-葡聚糖和橘黄刺杯菌中含少量β-(1→6)糖苷键连接侧链的β-(1→3)-葡聚糖，均有利于促进丁酸的积累，并倾向于增加厚壁菌门中特定菌群的相对丰度，特别是毛螺菌科、瘤胃球菌科、梭菌属、瘤胃菌菌属和粪厌氧棒杆菌属。其中，在体外发酵实验中还发现橘黄刺杯菌β-葡聚糖会特异性促进粪厌氧棒杆菌属的增长，24 h时其相对丰度从最初0.5%的接种量增加到24%。总而言之，可溶性β-葡聚糖主要发挥其益生特性并有利于维持代谢稳态，而不溶性β-葡聚糖会选择性促进特定菌群尤其是丁酸产生菌的大量繁殖，进一步促进丁酸的大量积累。

04

 结 语

作为一种常见的益生元，β-葡聚糖能够调节肠道菌群的组成并产生有益代谢物质，这有利于增强肠屏障功能、维持肠道内环境稳态、调节免疫系统和促进机体代谢健康。多糖与其益生活性间的构效关系是β-葡聚糖精确调控机体健康的理论基础，对于今后的实际应用具有重要指导意义。然而，目前研究大多集中于肠道菌群代谢产物中SCFAs对机体的健康影响，缺乏其他代谢物，如色氨酸、胆汁酸、吲哚衍生物和神经活性物质与宿主相互作用的系统解读。已有多项研究表明，肠道菌群与大脑、肺、肝脏、肾脏、皮肤等其他组织器官均形成了双向信息交流的复杂网络，肠道菌群代谢物通常作为信号分子，通过神经、内分泌、免疫和代谢等多重途径共同维持机体健康。这说明人体是一个高度复杂紧密关联的生态系统，而肠道菌群是整个系统的核心调控所在，这些发现可为靶向药物的开发和疾病的动态监测提供全新的理论视角，有利于推动精准治疗的实现。此外，β-葡聚糖的精细结构与其益生活性间构效关系的探究仍明显不足，分支比、空间构象等结构特性对其生物活性的影响同样关键。并且体外发酵与动物模型难以完全模拟β-葡聚糖在人体肠道内的利用效果。因此，未来应开展大规模、长期、针对不同人群的临床研究，利用多组学技术阐明β-葡聚糖-肠道菌群-宿主互作的完整信号网络，全面解锁β-葡聚糖的益生潜力，以推动其在个性化治疗领域的广泛应用。

第一作者：

刘懿航 硕士研究生

上海海洋大学食品学院与上海市农业科学院联合培养

研究生就读于上海海洋大学，所学专业为生物与医药专业（2023.09~2026.06），课题研究与论文开展均在上海市农业科学院进行；本科就读于江苏大学（2019.09~2023.06），所学专业为食品质量与安全。主要研究方向为多糖发酵与益生菌体外益生活性评价。研究生就读期间曾获得学业二等和四等奖学金。科研成果主要包括：《β-葡聚糖调节肠道菌群健康效应机制及构效关系研究》一作，《食品科学》（已录用）；《灵芝多糖对七株典型益生菌生长及代谢的差异性影响研究》一作，《食用菌学报》（已投）。

通信作者：

刘艳芳 研究员上海市农业科学院食用菌研究所 副所长

刘艳芳，上海市农业科学院三级研究员，博士生导师，博士毕业于江南大学，2012-2013年在加拿大农业部圭尔夫食品研究中心访学。现任上海市农业科学院食用菌研究所副所长，国家食用菌产业技术体系产品加工岗位科学家。兼任国家食用菌工程技术研究中心副主任、农业农村部南方食用菌资源利用重点实验室副主任，中国食用菌协会药用真菌委员会副主任委员、中国菌物学会食用真菌专业委员会副主任委员、中国食品科学技术学会科普工作委员会副秘书长，《食用菌学报》副主编，《菌物研究》《菌物学报》编委，Advanced Functional Foods青年编委。入选上海市东方英才计划拔尖人才、闵行区领军人才、福建省高层次B类人才，获上海市人才发展资金资助，上海市农业科学院中青年学术和技术带头人。主要从事食药用菌营养功能成分挖掘、加工技术和健康产品研发工作。围绕食用菌加工全产业链关键技术，在食用菌营养品质评价、功能成分挖掘利用和食用菌源大健康产品研发的创新与产业化应用等方面积累科技成果，获得上海市科技进步一等奖等省部级科技奖励5 项。近年主持国家食用菌产业技术体系、国家重点研发任务专项及省部级重大重点项目10余项，发表论文180余篇，其中SCI论文60余篇，获授权发明专利40余项；参编中英文著作各2 部；SCI-TOP期刊审稿人，在国内外学术会议上做特邀或专题报告30余次。与国内多家食用菌加工行业龙头企业开展技术服务和成果转化，开发食用菌系列健康产品，提升食用菌加工产业的附加值和技术能级。